離心濃縮儀在液相色譜（LC，尤其是HPLC和LC-MS）樣品前處理中扮演著“樣品富集與溶劑置換"的核心角色，是提高分析靈敏度和方法兼容性的工具。
在LC分析前使用離心濃縮儀，主要為了解決以下三個關(guān)鍵問題：
1、濃縮富集，提高靈敏度：將大體積樣品中的痕量目標(biāo)物濃縮到小體積，使其濃度達到LC或LC-MS的檢測限以上。這是常見的應(yīng)用。 2、溶劑置換，提升兼容性：將目標(biāo)物從與LC流動相不兼容的溶劑（如高濃度有機相、離子對試劑、揮發(fā)性溶劑）中轉(zhuǎn)移到與流動相兼容的溶劑中。
3、去除干擾，純化樣品：通過溫和蒸發(fā)，去除樣品基質(zhì)中易揮發(fā)的干擾物質(zhì)或緩沖鹽，減少基質(zhì)效應(yīng)和儀器污染。
環(huán)境水樣分析：將1升水樣中的農(nóng)藥殘留、抗生素等，通過固相萃取洗脫后，洗脫液體積可能仍有5-10mL。通過離心濃縮至0.5-1mL，濃度提高10-20倍，才能被LC-MS檢出。
生物樣品分析：血漿、尿液中的藥物代謝物濃度極低。蛋白質(zhì)沉淀或液液萃取后，有機相體積較大，需要濃縮至干或小體積，再復(fù)溶進樣。
天然產(chǎn)物篩選：植物粗提物體積大、目標(biāo)活性成分濃度低，需濃縮后方可進行LC指紋圖譜分析。
在復(fù)雜前處理后，樣品的溶劑環(huán)境可能不適合直接進樣：
離子對色譜后的樣品：如果后續(xù)想用LC-MS分析，必須去除離子對試劑（如TFA、七氟丁酸），否則會嚴(yán)重抑制離子化信號。方法是：將樣品吹干，再用適合MS的溶劑復(fù)溶。正相萃取后的樣品：收集到的洗脫液是正己烷、氯仿等非極性溶劑，與反相LC流動相不互溶。需要吹干后，用甲醇/乙腈/水復(fù)溶。高有機相樣品：固相萃取的洗脫液往往是高比例乙腈或甲醇。如果想進行弱保留化合物分析，直接進樣可能導(dǎo)致峰形不佳。可部分吹干后，用初始流動相復(fù)溶。
原則：在保證目標(biāo)物穩(wěn)定性的前提下，盡可能高效。
揮發(fā)性有機溶劑：如乙腈、甲醇、丙酮，室溫或30-40℃ 即可，真空下沸點很低。水溶液：需要較高溫度，45-60℃，以提供足夠蒸發(fā)能。熱敏感物質(zhì)：如蛋白質(zhì)、多肽、某些抗生素，應(yīng)使用 ≤35℃ 的低溫，甚至只靠真空濃縮。終點判斷與防止“過干"
LC-MS應(yīng)用大忌：將樣品過度干燥。某些目標(biāo)物（尤其是某些極性化合物或蛋白質(zhì)）在干燥后，會不可逆地吸附在管壁，導(dǎo)致復(fù)溶回收率極低。
實踐：濃縮至剛好干燥或剩余少量液膜時立即停止。對于經(jīng)驗不足者，可設(shè)置定時檢查，或使用帶有光學(xué)傳感器的型號自動判斷終點。
溶劑選擇：復(fù)溶劑應(yīng)盡可能與LC的初始流動相組成接近。例如，如果你的LC方法起始是5%乙腈/95%水，那么用5%乙腈水溶液復(fù)溶比用純乙腈更好，可以避免溶劑效應(yīng)導(dǎo)致的峰畸變。
操作：加入復(fù)溶劑后，需渦旋振蕩，并超聲輔助溶解數(shù)分鐘，確保目標(biāo)物溶解，不損失在管壁。
濃縮高濃度樣品后，冷阱和腔體可能有殘留。定期清潔樣品艙和冷阱。
對于不同批次的樣品，尤其是濃度差異大的，建議分開運行或使用獨立的轉(zhuǎn)子。
在液相色譜分析中，離心濃縮儀絕非可有可無的設(shè)備。它是連接粗提樣品與可進樣溶液之間的關(guān)鍵橋梁。通過精準(zhǔn)的濃縮和溶劑置換，它能將“測不出"變成“測得準(zhǔn)"，將“不能直接進樣"變成“兼容"。
